全血基因组 DNA 提取试剂盒使用说明书
Source:DNA提取试剂盒Author:admin Addtime:2019/02/22 Click:
规格: 50 T/ 100 T
保存: 室温(15 ℃ -25 ℃ ) 干燥保存, 复检期 12 个月, 2 ℃ -8 ℃ 保存时间更长 。
试剂盒内容: |
50 T |
100 T |
RNase A |
1ml |
1ml × 2 |
蛋白酶 K |
1ml |
1ml × 2 |
红细胞裂解液 |
120 ml |
120 ml× 2 |
溶液 A |
15 ml |
25 ml |
溶液 B |
15 ml |
30 ml |
漂洗液 |
15 ml |
15 ml× 2 |
洗脱液 |
10 ml |
20 ml |
吸附柱 |
50 个 |
100 个 |
收集管 |
50 个 |
100 个 |
说明书 |
1 份 |
1 份 |
产品简介:
本试剂盒采用可以特异性结合 DNA 的离心吸附柱和独特的缓冲液系统, 提取全血基因组 DNA。 离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料, 能够高效、 专一吸附 DNA, 可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。 提取的基因组 DNA 片段大, 纯度高, 质量稳定可靠。 使用本试剂
盒提取的基因组 DNA 可用于各种常规操作, 包括酶切、 PCR 、 文库构建、Southern 杂交等实验。
操作步骤:
使用前请先在漂洗液和溶液 B 中加入无水乙醇 ,加 入体积请参照瓶体上的标签。 所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
1 、 样 品 的 处 理 ( 本 产 品 适 用 于 处 理 新 鲜 的 或 已 经 添 加 抗 凝 剂 的0. lml- 1 ml 血液样品):
a 、 在血液样品中加入 2- 3 倍体积的红细胞裂解液, 充分颠倒混匀, 12000 rpm 离心 1min, 小心吸去上清, 沉淀应为白色或淡红色, 如果裂解不彻底, 可重复以上述步骤一次。 向沉淀中加 200 ul 溶液 A, 振荡至彻底混匀。
b、 如果处理的血样为禽类、 鸟类、 两栖类或更低级生物的血液, 其红细胞为有核细胞,因此处理量为 5- 20 u 1 ,不需要再用红细胞裂解液处理,直接加 200 ul 溶液 A, 振荡至彻底混匀。
2 、 向悬浮液中加入 20 ul (10 mg/ ml) 的 RNase A, 充分颠倒混匀, 室温放置 10 min。
3 、 加入 20 ul ( 10 mg /ml ) 的蛋白酶 K, 充分颠倒混匀, 65 ℃ 水浴消化 30 - 60 min, 消化期间可颠倒离心管混匀数次, 直至样品消化完全为止。
4 、 加入 2 倍体积溶液 B( 使用前请先检查是否己加入无水乙醇), 充分颠倒混匀,此时可能会出现絮状沉淀,不影响 DNA 的提取,可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中, 室温放置 2min。
5 、 12000 rpm 离心 2min, 弃废液, 将吸附柱放入收集管中。
6 、 向吸附柱中加入 700 ul 漂洗液( 使用前请先检查是否已加入无水乙醇), 12000 rpm 离心 1min, 弃废液, 将吸附柱放入收集管中。
7 、向吸附柱中加入 500 ul 漂洗液, 12000 rpm 离心 1min, 弃废液, 将吸附柱放入收集管中。
8 、 12000 rpm 离心 2min, 将吸附柱敞口置于室温或 50 ℃ 温箱放置数分钟, 目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、 PCR 等。
9 、将 吸附柱放入一个干净的离心管中 ,向 吸附膜中央悬空滴加 50 - 200 ul 经 65 ℃ 水浴预热的洗脱液, 室温放置 5min, 12000 rpm 离心 1min。
10 、 离心所得洗脱液再加入吸附柱中, 12000 rpm 离心 2min, 即可得到高质量的基因组 DNA。
注意事项:
1 、 本试剂盒置于室温( 15 -25 ℃ ) 干燥条件下可保存 12 个月, 更长时间的保存可置于 2 -8 ℃ 。
2 、常用的血液抗凝剂有 EDTA、ACD 和肝素等, 需注意的是, 如欲制备大分子量血液基因组 DNA , 可优先考虑使用 ACD 抗凝。 一般不使用肝素抗凝, 因为用肝素抗凝的血液提取的基因组 DNA 进行 PCR 扩增时, 有 PCR 扩增抑制现象。
3 、样品应避免反复冻融,否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量也下
降。
4 、 如果试剂盒中的溶液出现沉淀, 可在 65 ℃ 水浴中重新溶解后再使用, 不影响效果。
5 、绝大多数哺乳动物的全血如入全血中的红细胞无核,故在提取基因组DNA 时需去除不含 DNA 的无核红细胞, 以免影响红细胞裂解和 DNA 释放。 如果处理的血样为禽类、 鸟类、 两栖类或更低级生物的血液, 其红细胞为有核细胞, 因此处理量减少为 5- 20 ul, 不需要再用红细胞裂解液来裂解红细胞。
6 、 洗脱缓冲液的体积最好不少于 50 ul, 体积过小会影响回收效率: 洗脱液的 pH 值对洗脱效率也有影响, 若需要用水做洗脱液应保证其 pH 值在 8. 0 左右( 可用 Na OH 将水的 pH 值调至此范围), pH 值低于 7. 0 会降低洗脱效率。
相关试剂:
D1850 全血基因组 DNA 提取试剂系统
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